1. EDC 的活性不高，建议检查 EDC 是否已经潮解失效，同时 EDC 和 NHS 都需现配现用；2. 抗体的量不足，建议提高偶联时抗体的浓度；3. 反应缓冲液不适合，建议调整缓冲液的pH值或更换其他缓冲液；4. 反应过程中带入了含有氨基基团的其他蛋白，并与目的抗体发生竞争，建议严格检查所使用的试剂避免微球的非特异性吸附。
优化方向：1.通过换用大粒径标记物，增加标记抗体和包被抗体的用量;如果采用的是竞争法测抗原，可以抗原用来标记，抗体用来包被，用独立质控系统。2.抗体本身性能达不到要求，更换原料。
优化方向：1.此项目临床上测定区间多少，如果灵敏度较高可以考虑稀释一定倍数再测定。2线性上不去很有可能是标记和包被抗体的用量不合适，理论上用量不足，但实际应用时并不一定，建议对标记抗体和包被抗体设置梯度进行调试。3.换用小粒径的标记物，小粒径的标记物比表面积大，结合的抗体量更多。4.更换抗体。
优化方向：1.样本来源及赋值数据是否可靠?样本是否新鲜?有条件的话可以用对照试剂盒对样本进行检测，以确定样本的实际数值是否发生改变。⒉样本中存在干扰成分，需筛选合适的阻断剂。
胶体金或是荧光微球标记后的抗体时间久了出现轻微沉淀很正常，涡旋或是水浴超声沉淀即可消失，如果出现结块沉淀，超声后仍无法去除，则可能存在以下问题:1.标记体系中pH值不合适，导致在标记时就出现聚沉的现象，调整pH。2.封闭剂的成分或用量不合适，导致金颗粒或是微球表面有裸露位点，在储存时出现交联聚集;调整封闭剂用量或更换封闭剂再测试。3.储存液不合适，导致偶联的复合物不稳定出现解离，需重新配制储存液。
NC膜结合蛋白的量是有限的，超过上限后多余的蛋白没有结合或结合的不牢固，甚至会造成蛋白的堆积，形成空间位阻效应，致使检测时信号会不再增加甚至降低。在调整工艺时，需要根据测试结果选择合适的包被用量。
这种假阳是由于标记物和包被的蛋白非特异性结合造成的，项目中很常见，可从以下几个方面解决:1.在标记时更换封闭剂成分或是增加用量。2.在不影响试剂灵敏度的情况下，降低标记和包被抗体用量，将整体信号压下来，来消除这种本底信号。3.增加离子浓度，或更换稀释液，改用其他体系进行尝试。
正常情况下是不会出现沉淀，如出现沉淀，且液体浑浊，考虑是长菌，不能用了。如出现沉淀，液体不浑浊，有可能是成分析出，建议1500转离心5分钟去除沉淀再使用。
人工血清基质建议长期保存建议分装放置≤-20°C，尽量避免多次冻融。短期可以保存在2-8°C。 运输条件为冰袋运输。
抗原抗体长期保存建议分装放置≤-20°C ，尽量避免多次冻融。一个月以内可以用完的可以保存在2-8°C。 抗原抗体一般情况是用冰袋运输，少量抗原抗体需要用干冰运输。
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